Agar Sangre de Cordero

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$ 44.000 + IVA

Es una combinación de un agar base nutritivo con el agregado de sangre ovina, este agar aporta muchos factores de enriquecimiento, permitiendo el aislamiento de la mayoría de microorganismos. Se usa también para ver la capacidad hemolítica de las bacterias.

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Descripción

AGAR SANGRE DE CORDERO

Agar sangre de cordero de venta en Colombia, pregúntenos en el cotizador para precios, es un medio de cultivo utilizado en microbiología para el crecimiento y la identificación de bacterias, especialmente aquellas que requieren nutrientes adicionales para su crecimiento. Este medio de cultivo contiene una variedad de nutrientes, incluyendo proteínas, carbohidratos y lípidos, y también se enriquece con sangre, lo que proporciona factores de crecimiento adicionales para las bacterias.

Agar sangre de cordero es un medio de cultivo versátil que se utiliza en una variedad de aplicaciones en el laboratorio. En particular, es útil para el aislamiento y la identificación de bacterias patógenas que causan infecciones en humanos y animales. La sangre en el agar proporciona nutrientes adicionales para las bacterias y ayuda a detectar patrones de hemólisis, que pueden ser utilizados para identificar ciertos tipos de bacterias.

Agar sangre puede ser preparado con diferentes tipos de sangre, incluyendo sangre de caballo, oveja, conejo y humano. La sangre en el agar es estabilizada mediante calentamiento, lo que ayuda a prevenir la descomposición de los nutrientes y mantiene la integridad de las células sanguíneas.

En el laboratorio, Agar sangre se utiliza en una amplia variedad de aplicaciones, incluyendo la identificación de bacterias patógenas en muestras clínicas y la determinación de la sensibilidad de las bacterias a los antibióticos. La muestra se inocula en el agar y se incuba durante varios días a una temperatura óptima de 35-37°C. Si las bacterias están presentes en la muestra, formarán colonias características en el agar que pueden ser identificadas por técnicas de tinción y análisis bioquímico.

APLICACIÓN Y USO DEL AGAR SANGRE

Medio para el aislamiento y cultivo de numerosos microorganismos y la observación de reacciones hemolíticas.

COMPONENTES:

  • Infusión corazón de ternera.
  • Triptona. 
  • Cloruro de Sodio. 
  • Agar liofilizado.
  • Sangre de cordero.

 

CONTENIDO ESTUCHE DEL AGAR SANGRE DE CORDERO

  • Unidad.  Paquete por 10 placas. 

 

MATERIALES ADICIONALES REQUERIDOS NO SUMINISTRADOS:

  • Mechero de Bunsen.
  • Asas bacteriológicas.
  • Elementos de protección.
  • Incubadora a 35 – 37°C.
  • Guantes. 
  • Cepas ATCC.

 

METODOLOGÍA:

  • Principio del método:

Este medio combina las virtudes de la Triptona, infusión de corazón, que favorece el desarrollo de los microorganismos exigentes y la obtención de colonias eugónicas. El Almidón incrementa el desarrollo de Neisserias y las reacciones de hemólisis de algunos estreptococos. El cloruro de sodio mantiene el balance osmótico y el agar es el agente solidificante.

Puede ser utilizado como medio base para ser suplementado con sangre, logrando así un medio más enriquecido o selectivo de acuerdo al aditivo. Si se suplementa con sangre de cordero, se logra el crecimiento y observación de las reacciones hemolíticas de los microorganismos inoculados. 

  • Criterios de desempeño y limitaciones del método:
  • Aislamiento de bacterias.
  • Determinación de hemólisis.  


  • Preparación de reactivos:

El medio se encuentra listo para ser usado.


  • Condiciones de almacenamiento y estabilidad de los reactivos:

El medio de cultivo debe ser conservado a una temperatura de 2-8°C, en su empaque original, evitando la exposición a la luz directa, no debe ser congelado con el fin de preservar el medio.

Almacenar las placas en posición invertida para evitar que el agua de condensación caiga sobre la superficie del medio.


  • Espécimen o muestra

Muestras clínicas, industriales o investigativas.


  • Procedimiento:
  1. Contar con un lugar que tenga normas de asepsia estrictas.
  2. Para contar con una técnica estéril, realizar todo el procedimiento junto a la llama del mechero y/o en una cabina de flujo laminar.
  3. Tener asa estéril para la toma de muestra.
  4. Sembrar suavemente sobre la superficie del producto.
  5. Incubar las placas entre 35 – 37°C en posición invertida, por 18-24-48-72-120 horas, según las técnicas implementadas por cada laboratorio.
  6. Dependiendo de las exigencias del microorganismo almacenar en la atmósfera adecuada.
  7. Luego de la incubación, observar el cultivo, según las características de las colonias determinar los posteriores estudios.

 

CÁLCULO DE LOS RESULTADOS ANALÍTICOS:

 

CONTROL DE CALIDAD

  • Prueba Macroscópica: 
  • Apariencia: Medio de cultivo semisólido de color cereza.
  • pH final: 7.3 ± 0.2 (25°C).
  • Volumen: 19 mL ±.
  • Prueba de esterilidad: Se realiza una prueba de esterilidad sometiendo un número representativo del lote a incubación entre 24 y 120 horas, a 35 – 37°C.
  • Prueba de efectividad: La efectividad del medio se controla mediante el cultivo de cepas control ATCC de:

 

Microorganismos

Cepa

Crecimiento

Escherichia coli

ATCC 25922

Colonia color blanco

Staphylococcus aureus

ATCC 29213

B-hemolisis 

Enterococcus faecalis

ATCC 19615

B-hemolisis

 

PRECAUCIONES Y ADVERTENCIAS CON EL AGAR SANGRE

  • Para uso de diagnóstico in vitro.
  • Utilizar el medio de cultivo antes de la fecha de expiración.
  • Usar elementos de protección personal durante el uso del producto por la exposición a muestras potencialmente peligrosas.
  • El desecho del medio de cultivo se debe realizar, según los protocolos implementados por cada institución.

 

TECNOLOGÍA – EQUIPO UTILIZADO:

  • APS One.
  • Cabina de flujo laminar.
  • Master Clave.
  • Autoclave.
  • Cepario.
  • Incubadora

 

BIBLIOGRAFÍA:

  • Hunter D. and Kearns M., 1977, Brit. Vet. J., 133:486.
  • Snavely and Brahier, 1960, Am. J. Clin. Pathol., 33:511.
  • Waterworth and Pamela M., 1955, Brit. J. Exp. Pathol., 36:186.
  • Becton, Dickinson and Company. Section III Culture Medium and
  • Ingredients Manual of Microbiological Culture Media. Pg 151 -153 Maryland 2003.

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