Agar Cromógenico Cándida

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$ 60.500 + IVA

Agar Cromógenico Cándida es una formulación cromogénica alternativa a los medios tradicionales para la detección y recuperación de  Candida spp, logrando gracias a los sustratos cromógenicos, la detección directa de las distintas especies de Cándida en una sola placa.

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Descripción

Agar Cromógenico Cándida

APLICACIÓN Y USO DEL AGAR CROMOGENICO CANDIDA

El Agar Cromogénico Candida es un medio cromogénico diferencial y selectivo para el aislamiento e identificación de especies de Candida.

 

COMPONENTES DEL AGAR CROMOGENICO CANDIDA

  • Peptonas especiales
  • Extracto de levadura
  • Hidrógeno fosfato dipotásico
  • Mezcla cromogénica
  • Cloranfenicol
  • Agar liofilizado

 

CONTENIDO ESTUCHE DEL AGAR CROMOGENICO CANDIDA

  • Unidad, paquete por 10 placas.

 

MATERIALES ADICIONALES REQUERIDOS NO SUMINISTRADOS:

  • Mechero de Bunsen.
  • Asas bacteriológicas.
  • Elementos de protección.
  • Incubadora a 37°C.
  • Guantes. 
  • Cepas ATCC.

 

METODOLOGÍA:

 

  • Principio del método:

En este medio cromogénico las tres diferentes especies del género Candida: albicans, tropicalis y krusei pueden ser identificadas y diferenciadas gracias a los sustratos cromogénicos presentes en el medio. 

El cromógenico X-NAG, está dirigido a detectar la actividad de la hexosaminidasa; permitiendo la detección especifica de Candida tropicalis y Candida albicans. El cromógenico BCIP, está dirigido a detectar la actividad de la fosfatasa alcalina, permite detectar Candida krusei. 

La glucosa es el hidrato de carbono fermentable que proporciona carbono y energía. La peptona proporciona nitrógeno, vitaminas, minerales y aminoácidos esenciales para el crecimiento. El Cloranfenicol es un antibiótico que ayuda a aislar hongos patógenos de material altamente contaminado, ya que inhibe la mayoría de las bacterias contaminantes. El agar bacteriológico es el agente solidificante. 

 

  • Criterios de desempeño y limitaciones del método:

Medio diferencial y selectivo para el aislamiento e identificación presuntiva de especies de Cándida de importancia clínica.

 

  • Preparación de reactivos:

El medio se encuentra listo para ser usado.

 

  • Condiciones de almacenamiento y estabilidad de los reactivos:

El medio de cultivo debe ser conservado a una temperatura de 2-8°C, en su empaque original, evitando la exposición a la luz directa, no debe ser congelado con el fin de preservar el medio.

Almacenar las placas en posición invertida para evitar que el agua de condensación caiga sobre la superficie del medio.

 

Espécimen o muestra 

Se utiliza para muestras clínicas. 

 

Procedimiento:

  1. Contar con un lugar que tenga normas de asepsia estrictas.
  2. Para contar con una técnica estéril, realizar todo el procedimiento junto a la llama del mechero y/o en una cabina de flujo laminar.
  3. Tener asa estéril para la toma de muestra.
  4. Sembrar suavemente sobre la superficie del producto.
  5. Incubar las placas entre 35 y 37°C en posición invertida, 18-24-48-72-120 horas, según las técnicas implementadas por cada laboratorio.
  6. Dependiendo de las exigencias del microorganismo almacenar en la atmósfera adecuada.
  7. Luego de la incubación, observar el cultivo, según las características de las colonias determinar los posteriores estudios. 

 

CÁLCULO DE LOS RESULTADOS ANALÍTICOS:

  

CONTROL DE CALIDAD DEL AGAR CROMOGENICO CANDIDA

  • Prueba Macroscópica:
  • Apariencia: Medio de cultivo semisólido de color beige.
  • pH final: 6.3 ± 0.2 (25°C).
  • Volumen: 19 mL ±.
  • Prueba de esterilidad: Se realiza una prueba de esterilidad sometiendo un número representativo del lote a incubación entre 24 y 120 horas, a 35 – 37°C.
  • Prueba de efectividad: La efectividad del medio se controla me mediante el cultivo de cepas control ATCC de:
Microorganismos Cepa Crecimiento
Candida albicans ATCC 14053 Satisfactorio. Colonia rosada
Candida krusei ATCC 14243 Satisfactorio. Colonia azul turquesa
Escherichia coli ATCC 25922 Inhibición total

 

PRECAUCIONES Y ADVERTENCIAS DEL AGAR CROMOGENICO CANDIDA

  • Para uso de diagnóstico in vitro.
  • Utilizar el medio de cultivo antes de la fecha de expiración.
  • Usar elementos de protección personal durante el uso del producto por la exposición a muestras potencialmente peligrosas.
  • El desecho del medio de cultivo se debe realizar, según los protocolos implementados por cada institución

 

TECNOLOGÍA – EQUIPO UTILIZADO:

  • APS One.
  • Cabina de flujo laminar.
  • Master Clave.
  • Autoclave.
  • Cepario.

 

BIBLIOGRAFÍA:

  • Perry J. L. and Miller G. R., 1987, J. Clin. Microbiol., 25: 2424 -2425.
  • Rousselle P., Freydiere A., Couillerot P., de Montclos H. and GilleY., 1994, J. Clin. Microbiol. 32:3034-3036.
  • Colomina Rodríguez J, Villar Serrano J, Guerrero Espejo A. Fiabilidad de medio de cultivo cromogénico-identificación presuntiva de microorganismos patógenos. (4,6). Enferm Infecc Microbiol Clin 2004; 22(4): 251-256. 
  • Becton, Dickinson and Company. Section III Culture Medium and Ingredients Manual of Microbiological Culture Media. Pg 151 -153 Maryland 2003.
  • Sheehan, D.J. et. al.(1999) Current and Emerging Azole Antifungal Agents Clinical Microbiology Reviews, 12 (1): 40-79 Odds, F.C. (1988) Candida and candidiosis, 2nd ed, Baillière Tindall, London, England. Ibrahim E.H. et al. (2001) The influence of inadequate antimicrobial treatment of bloodstream infections on patient outcomes in the ICU setting. Chest, 118 (1): 146-55

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