Agar Mycosel

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$ 47.400 + IVA

Este agar es un medio altamente selectivo con Cicloheximida y cloranfenicol. Es recomendado para el aislamiento de hongos patógenos a  partir de materiales que contengan mucha cantidad de flora fúngica y bacterias.

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Descripción

Agar Mycosel

Agar mycosel de venta en Bogotá para laboratorios, es un medio de cultivo utilizado en microbiología para el aislamiento y la identificación de hongos patógenos, especialmente aquellos que causan infecciones en humanos y animales. Este medio de cultivo fue desarrollado por Sabouraud en la década de 1890 y ha sido ampliamente utilizado desde entonces.

Agar mycosel es una mezcla compleja de nutrientes que incluye peptona, extracto de levadura, dextrosa y cloranfenicol, entre otros ingredientes. El cloranfenicol es un antibiótico selectivo que se agrega al medio para inhibir el crecimiento de bacterias no deseadas. El agar mycosel también contiene ciclobarbital de sodio, un agente alcalinizante que ayuda a fomentar el crecimiento de hongos.

La principal ventaja de Agar mycosel es su capacidad para seleccionar y aislar hongos patógenos en muestras clínicas. Este medio de cultivo es altamente selectivo para hongos, lo que significa que es capaz de inhibir el crecimiento de otras especies microbianas que podrían estar presentes en la muestra. Además, Agar mycosel es capaz de soportar el crecimiento de una amplia variedad de hongos, lo que lo hace útil para la identificación de muchos tipos diferentes de infecciones micóticas.

En el laboratorio, Agar mycosel se utiliza típicamente en combinación con otras técnicas de diagnóstico, como la tinción de Gram y la observación microscópica, para identificar el tipo de hongo presente en la muestra. La muestra se inocula en el agar y se incuba durante varios días a una temperatura óptima de 30-35°C. Si el hongo está presente en la muestra, formará colonias características en el agar que pueden ser identificadas por su morfología y otros rasgos.

APLICACIÓN Y USO DEL AGAR MYCOSEL

Medio selectivo con Cicloheximida y cloranfenicol. Aisla hongos patógenos a partir de muestras mixtas con flora fúngica y bacterias.

 

COMPONENTES DEL AGAR MYCOSEL

  • Harina de soja digerida por enzimas papaícas.
  • Dextrosa.
  • Agar liofilizado. 
  • Cicloheximida.
  • Cloranfenicol.

 

CONTENIDO ESTUCHE DEL AGAR MYCOSEL

  • Unidad.  Paquete por 10 placas.

 

MATERIALES ADICIONALES REQUERIDOS NO SUMINISTRADOS:

  • Mechero de Bunsen.
  • Asas bacteriológicas.
  • Elementos de protección.
  • Incubadora a 35 – 37°C.
  • Guantes. 
  • Cepas ATCC.

 

METODOLOGÍA:

  • Principio del método:

Las propiedades nutritivas de Mycosel agar las suministra la peptona preparada a partir de harina de soja. La dextrosa es una fuente de energía para el metabolismo de los hongos. La Cicloheximida inhibe la mayoría de los hongos Saprofíticos. El cloranfenicol es un antibiótico de amplio espectro que inhibe una amplia variedad de bacterias Gram positivas y Gram negativas, se utiliza para el aislamiento de hongos a partir de diferentes fuentes y es recomendado para la recuperación de Dermatofitos.

  • Criterios de desempeño y limitaciones del método:

Medio selectivo para el aislamiento de hongos patógenos a partir de materiales con flora mixta de otros hongos y bacterias.


  • Preparación de reactivos:

El medio se encuentra listo para ser usado.


  • Condiciones de almacenamiento y estabilidad de los reactivos:

Almacenar en lugar oscuro a una temperatura de 2 a 8 ºC, colocando las placas en posición invertida para evitar que el agua de condensación pueda caer sobre la superficie del medio. Este medio puede manipularse con cuidado evitando movimientos bruscos o caídas que puedan resquebrajar la cepa del medio.

Conservándolo en las condiciones óptimas el medio es estable hasta la fecha de expedición que se encuentra impresa en la placa y caja. 

La congelación arruina totalmente el medio.


  • Espécimen o muestra:

Cultivo de hongos, para uso clínico, industrial o investigativo.

 

Procedimiento:

  1. Contar con un lugar que tenga normas de asepsia estrictas.
  2. Para contar con una técnica estéril, realizar todo el procedimiento junto a la llama del mechero y/o en una cabina de flujo laminar.
  3. Tener asa estéril para la toma de muestra.
  4. Sembrar suavemente sobre la superficie del producto.
  5. Sembrar en la superficie del medio de cultivo con un asa de inoculación estéril para obtener colonias aisladas. (Según protocolo interno de cada laboratorio).
  6. Incubar de 2 a 3 semanas, aproximadamente entre 35 – 37°C.
  7. Luego de la incubación, observar el cultivo, según las características de las colonias determinar los posteriores estudios.

 

CÁLCULO DE LOS RESULTADOS ANALÍTICOS:

 

CONTROL DE CALIDAD DEL AGAR MYCOSEL

  • Prueba Macroscópica: 
  • Apariencia: Medio de cultivo semisólido de color amarillo ligeramente opalescente.
  • pH final: 6.5 ± 0.2 (25°C).
  • Volumen: 19 mL ±.
  • Prueba de esterilidad: Se realiza una prueba de esterilidad sometiendo un número representativo del lote a incubación entre 24 y 120 horas, a 35 – 37°C.
  • Prueba de efectividad: La prueba se debe realizar con un control negativo y uno positivo. La efectividad del medio se controla mediante el cultivo de cepas control ATCC de:

 

Microorganismos

Cepa

Crecimiento

Candida albicans

ATCC 14053

Satisfactorio. Colonia Blanca

Escherichia coli

ATCC 25922

Inhibición total

 

PRECAUCIONES Y ADVERTENCIAS DEL AGAR MYCOSEL

  • Para uso de diagnóstico in vitro.
  • Utilizar el medio de cultivo antes de la fecha de expiración.
  • Usar elementos de protección personal durante el uso del producto por la exposición a muestras potencialmente peligrosas.
  • El desecho del medio de cultivo se debe realizar, según los protocolos implementados por cada institución.

 

TECNOLOGÍA – EQUIPO UTILIZADO:

  • APS One.
  • Cabina de flujo laminar.
  • Master Clave.
  • Autoclave.
  • Incubadora.

 

BIBLIOGRAFÍA:

  • Becton, Dickinson and Company. Section III Culture Medium and Ingredients 
  • Manual of Microbiological Culture Media. Pg 151-153 Maryland 2003. 
  • Nash P, Krenz.MM. Culture Media. Chapter 121. pg 1226-1228 in: Manual of 
  • Clinical Microbiology, edited by Balows A, Hauser WJ, Jr, Herrmann KL,     Isenberg 
  • HD, Shadomy HJ. Fifth Ed. 1991 Am Soc Microbiol. Washington DC. 
  • Wentworth BB, Baselkivs, Doern GV et al. Diagnostic procedures for bacterial 
  • infections 7th Ed.1987. Washington, D.C AM Pub Health Ass.
  • Insberg, H.D. (ed.). 1992. Clinical microbiology procedures handbook, vol. I. American Society for Microbiology, Washington, D.C.5.

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