Agar Streptococcus Tipo B

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Agar Streptococcus Tipo B se utiliza para el aislamiento y la identificación de Streptococcus agalactiae (Streptococcus del grupo B) a partir de muestras clínicas.

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Descripción

Agar Estreptococos Tipo B

Aplicación y uso del Agar Streptococcus Tipo B

Se utiliza para el aislamiento y la identificación de Streptococcus agalactiae (Streptococcus del grupo B) a partir de muestras clínicas.

La adición del suplemento GRC (Glóbulos rojos de cordero) proporciona mayor recuperación del microorganismo.  

 

COMPONENTES DEL AGAR Streptococcus Tipo B

  • Almidón de maíz.
  • Glucosa.
  • Sulfato de magnesio.
  • MOPS.
  • Fosfato disódico de hidrógeno.
  • Cristal violeta.
  • Proteosa peptona.

 

CONTENIDO DEL ESTUCHE – PRESENTACIÓN DEL AGAR Streptococcus Tipo B

  • Unidad, paquete por 10 unidades. 

 

MATERIALES ADICIONALES REQUERIDOS NO SUMINISTRADOS:

  • Mechero de Bunsen.
  • Asas bacteriológicas.
  • Elementos de protección.
  • Incubadora a 37°C.
  • Guantes. 
  • Cepas ATCC.

 

METODOLOGÍA

  • Principio del método:

La fuente de proteínas produce pigmentos a través de la Proteosa peptona que es estabilizado por el almidón. Para la estabilización del pH, es necesario combinar MOPS y fosfato. La inhibición de estafilococos se debe gracias al cristal violeta. Adicionalmente, se añaden los inductores de crecimiento para eliminar bacterias Gram negativas y anaerobios exigentes.


  • Criterios de desempeño y limitaciones del método:

Aislamiento e identificación de Streptococcus agalactiae


  • Preparación de reactivos:

El medio se encuentra listo para ser usado.


  • Condiciones de almacenamiento y estabilidad de los reactivos:

El medio de cultivo debe ser conservado a una temperatura de 2-8°C, en su empaque original, evitando la exposición a la luz directa, no debe ser congelado con el fin de preservar el medio.

Almacenar las placas en posición invertida para evitar que el agua de condensación caiga sobre la superficie del medio.


  • Espécimen o muestra

Muestras clínicas, industriales o investigativas 


  • Procedimiento
  1. Contar con un lugar que tenga normas de asepsia estrictas.
  2. Para contar con una técnica estéril, realizar todo el procedimiento junto a la llama del mechero y/o en una cabina de flujo laminar.
  3. Tener asa estéril para la toma de muestra.
  4. Sembrar suavemente sobre la superficie del producto.
  5. Incubar las placas a 37°C en posición invertida, 18-24-48-72-120 horas, según las técnicas implementadas por cada laboratorio
  6. Dependiendo de las exigencias del microorganismo almacenar en la atmósfera adecuada.
  7. Luego de la incubación, observar el cultivo, según las características de las colonias determinar los posteriores estudios.

 

CALCULO DE LOS RESULTADOS ANALITICOS 

 

CONTROL DE CALIDAD DEL AGAR Streptococcus Tipo B

  • Prueba Macroscópica: 
  • Apariencia: Medio de cultivo semisólido de color amarillo o rojo si tiene adición de GRC.
  • pH final: 7.4 ± 0.2 (25°C).
  • Volumen: 19 mL ±.
  • Prueba de esterilidad: Se realiza una prueba de esterilidad sometiendo un número representativo del lote a incubación entre 24 y 120 horas, a 35-37°C.
  • Prueba de Efectividad: La efectividad del medio se controla mediante el cultivo se cultivan con el siguiente control ATCC:



Microorganismos

Cepa

Crecimiento

Escherichia coli

ATCC 25922

Inhibición (parcial o completa)

Streptococcus agalactiae

ATCC 12386

Crecimiento (moderado a denso)

 

PRECAUCIONES Y ADVERTENCIAS DEL AGAR Streptococcus Tipo B

  • Para uso de diagnóstico in vitro.
  • Utilizar el medio de cultivo antes de la fecha de expiración.
  • Usar elementos de protección personal durante el uso del producto por la exposición a muestras potencialmente peligrosas 
  • El desecho del medio de cultivo se debe realizar, según los protocolos implementados por cada institución

 

TECNOLOGÍA Y EQUIPOS UTILIZADOS:

  • Cabina de flujo laminar.
  • APS One.
  • Master Clave.
  • Autoclave.
  • Incubadora.
  • Cepario.

 

BIBLIOGRAFIA

  • Becton Dickinson (2013). BD Group B Streptococcus (Granada Medium. Archivo PDF. Recuperado de:
  • http://www.bd.com/resource.aspx?IDX=8808
  • Sneath, J.T. Staley, and S.T. Williams (ed.). 1994. Bergey’s ManualTM of determinative bacteriology, 9th ed. Williams & Wilkins, Baltimore. 10. Facklam, R.R., D.F. Sahm, and L.M. Teixeira. 1999. EnteroCoCCU5, p. 297-305.P.R. 
  • Bayona, Martín (2013). Condiciones microbiológicas para el cultivo de Helicobacter pylori. Revista Colombiana de Gastroenterología. Vol. 28 Núm. 2.
  • Nakata, Moroni (2007). Efecto antimicrobiano in vivo de la infusión de Camellia sinensis sobre bacterias orales. Revista de Investigación UNMSM. Vol. 10, Núm. 2.

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